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艾本森科學(xué)儀器有限公司提供的漩渦振蕩器在對(duì)不同的實(shí)驗(yàn)為實(shí)驗(yàn)提供了準(zhǔn)確保障!
原理:在變性條件下將待檢的RNA樣品進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳,繼而按照同Southern Blot相同的原理進(jìn)行轉(zhuǎn)膜和用探針進(jìn)行雜交檢測。
用途:MixPlus漩渦振蕩器在檢測樣品中是否含有基因的轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物(mRNA)及其含量的應(yīng)用。
實(shí)驗(yàn)方法:
[儀器、試劑、材料]
?。ㄒ唬﹥x器
恒溫水浴箱,電泳儀,凝膠成像系統(tǒng),真空轉(zhuǎn)移儀,真空泵,UV 交聯(lián)儀,雜交爐,恒溫?fù)u床,脫色搖床,MixPlus漩渦振蕩器(合肥艾本森科學(xué)儀器有限公司),分光光度計(jì),微量移液器,電爐(或微波爐),離心管,燒杯,量筒,三角瓶,等。
(二)材料
總RNA樣品或mRNA樣品,探針模板DNA(25 ng),尼龍膜
?。ㄈ┰噭?/p>
NorthernMax Kit(Cat. # 1940,Ambion, Inc.),瓊脂糖,DEPC, X光底片,底片暗盒,Random Primer, dNTP Mixture,111 TBq/mmol[a-32P]dCTP,Exo-free Klenow Fragment和10 X Buffer, Sephadex G-50,SDS,雙氧水, 滅菌水等。
[方法與步驟]
1. 用具的準(zhǔn)備:
180度烤器皿:三角錐瓶、量筒、鑷子、刀片等4小時(shí)。
電泳槽:清洗梳子和電泳槽,并用雙氧水浸泡過夜,用DEPC水沖洗,干燥備用。
處理DEPC水(2 L)備用。
2.用RNAZaP去除用具表面的RNase酶污染
用RNAZap擦洗梳子,電泳槽,刀片等,然后用DEPC水沖洗二次,去除RNAZap。
3.制膠:
1). 稱取0.36mg 瓊脂糖加入三角錐瓶中,加入32.4mlDEPC水后,微波爐加熱至瓊脂糖*熔解。60℃空氣浴平衡溶液 (需加DEPC水補(bǔ)充蒸發(fā)的水分)
2). 在通風(fēng)廚中加入3.6ml的10*Denaturing Gel buffer,輕輕振蕩混勻。
注意盡量避免產(chǎn)生氣泡。
3). 將熔膠倒入制膠板中,插上梳子
如果膠溶液上存在氣泡,可以用熱的玻璃棒或其它方法去除,或?qū)馀萃频侥z的邊緣。注:膠的厚度不能超過0.5cm。
4).膠在室溫下*凝固后,將膠轉(zhuǎn)移到電泳槽中,加入1x MOPS Gel Running buffer蓋過膠面約1cm,小心拔出梳子。(配制250ml 1*MOPS Gel Running buffer,在電泳過程中補(bǔ)充蒸發(fā)的buffer。)
5).檢查點(diǎn)樣孔。
4. RNA樣品的制備
在RNA樣品中加入3倍體積的formaldehyde load dye和適當(dāng)?shù)腅B(終濃度為10ug/ml)?;靹蚝螅?5℃空氣浴15min。短暫低速離心后,立即放置于冰上5min。
5. 電泳:
1). 將RNA樣品小心加到點(diǎn)樣孔中。
2). 在5V/cm下跑膠(5x14cm)。在電泳過程中,每隔30min短暫停止電泳,取出膠,混勻兩極的電泳液后繼續(xù)電泳。當(dāng)膠中的溴紛藍(lán)(500bp)接近膠的邊緣時(shí)終止電泳。
3). 紫外燈下,檢驗(yàn)電泳情況,并用尺子測量18S、28S、溴紛藍(lán)到點(diǎn)樣孔的距離。
注意不要讓膠在紫外燈下曝光太長時(shí)間。
6. 轉(zhuǎn)膜
1).用3%雙氧水浸泡真空轉(zhuǎn)移儀后,用DEPC水沖洗。
2).用RNAZap擦洗多孔滲水屏和塑膠屏,用DEPC水沖洗二次。
3).連接真空泵和真空轉(zhuǎn)移儀,剪取一塊適當(dāng)大小的膜(膜的四邊緣應(yīng)大于塑膠屏孔口的5mm),膜在Transfer buffer浸濕5分鐘后,放置在多孔滲水屏的適當(dāng)位置。
4).蓋上塑膠屏,蓋上外框,扣上鎖。
5).將膠的多余部分切除,切后的膠四邊緣要能蓋過塑膠屏孔,并至少蓋過邊緣約2mm,以防止漏氣。
6).將膠小心放置在膜的上面,膜與膠之間不能有氣泡。
7).打開真空泵,使壓強(qiáng)維持在50~58mbar;立即將transfer buffer加到膠面和四周。每隔10min在膠面加上1ml transfer buffer,真空轉(zhuǎn)移2小時(shí)。
8).轉(zhuǎn)膜后,用鑷子夾住膜,于1x MOPS Gel Running buffer中輕輕泡洗10秒,去除殘余的膠和鹽。
9).用吸水紙吸取膜上多余的液體后,將膜置于UV交聯(lián)儀中自動(dòng)交聯(lián)。
10).將膠和紫外交聯(lián)后的膜,在紫外燈下檢測轉(zhuǎn)移效率。(避免太長的紫外曝光時(shí)間)
11).將膜在-20℃保存。
7. 探針的制備
1).在1.5ml離心管中配制以下反應(yīng)液:
模板DNA(25 ng) 1ul
Random Primer 2ul
滅菌水 11ul
總體積:14ul
2).95°C加熱3分鐘后,迅速放置于冰冷卻5min。
3).在離心管中按下列順序加入以下溶液:
10×Buffer 2.5ul
dNTP Mixture 2.5ul
111 TBq/mmol[a-32P]dCTP 5 ul
Exo-free Klenow Fragment 1 ul
4).混勻后(25ul),37°C下反應(yīng)30分鐘。短暫離心,收集溶液到管底。
5).65°C加熱5min使酶失活。
8. 探針的純化及比活性測定:
1).準(zhǔn)備凝膠:將1g凝膠加入30ml的DEPC水中,浸泡過夜。用DEPC水洗滌膨脹的凝膠數(shù)次,以除去可溶解的葡聚糖。換用新配制的TE(PH7.6)。
2).取1ml一次性注射器,去除內(nèi)芯推捍,將注射器底部用硅化的玻璃纖維塞住,在注射器中裝填Sephadex G-50凝膠。
3).將注射器放入一支15ml離心管中,注射器把手架在離心管口上。1600g離心4分鐘,凝膠壓緊后,補(bǔ)加Sephadex G-50凝膠懸液,重復(fù)此步直至凝膠柱高度達(dá)注射器0.9ml刻度處
4).100ul STE緩沖液洗柱,1600g離心4min。重復(fù)3次。
5).倒掉離心管中的溶液后,將一去蓋的1.5ml離心管置于管中,再將裝填了Sephadex G-50凝膠的注射器插入離心管中,注射器口對(duì)準(zhǔn)1.5ml離心管。
6).將標(biāo)記的DNA樣品加入25 ul STE,取出0.5ul點(diǎn)樣于DE8 paper上,其余上樣于層析柱上。
7).1600g離心4min,DNA將流出被收集在去蓋的離心管中,而未摻入DNA的dNTP則保留在層析柱中。取0.5ul己純化的探針點(diǎn)樣于DE8-paper.
8). 測比活性(試劑比活要求:106cpm/ml)。
9.預(yù)雜交:
1).將預(yù)雜交液在雜交爐中68℃預(yù)熱,并漩渦使未溶解的物質(zhì)溶解。
2).加入適當(dāng)?shù)腢LRAhyb到雜交管中(以100cm2 膜面積加入10mlULRAhyb雜交液),42℃預(yù)雜交4 hr。
10.探針變性:
1).用10 mM EDTA將探針稀釋10倍。
2).90℃熱處理稀釋后探針10min后,立即放置于冰上5min。
3).短暫離心,將溶液收集到管底。
11.雜交:
1).加入0.5ml ULTRAhyb到變性的探針中,混勻后,將探針加到預(yù)雜交液中。
2).42℃雜交過夜(14~24hr)。
雜交完后,將雜交液收集起來于-20℃保存。
12.洗膜:
1).低嚴(yán)緊性洗膜:加入Low Stringency Wash Solution#1 (100cm2膜面積加入20ml洗膜溶液),室溫下,搖動(dòng)洗膜5min兩次。
2).高嚴(yán)緊性洗膜: 加入High Stringency Wash Solution#2 (100cm2膜面積加入20ml洗膜溶液),42℃ 搖動(dòng)洗膜20min兩次。
13.曝光:
1). 將膜從洗膜液中取出,用保鮮膜包住,以防止膜干燥。
2). 檢查膜上放射性強(qiáng)度,估計(jì)曝光時(shí)間
3). 將X光底片覆蓋與膜上,曝光
4). 沖洗X光底片,掃描記錄結(jié)果。
14.去除膜上的探針:將200ml 0.1%SDS(由DEPC水配制)煮沸后,將膜放入,室溫下讓SDS冷卻到室溫,取出膜,去除多余的液體,干燥后,可以保存幾個(gè)月。
15.雜交結(jié)果
操作應(yīng)該小心,但不必緊張。用于RNA電泳、轉(zhuǎn)膜的所有器械、用具均須處理以除去RNAse 酶,以免樣品的降解。轉(zhuǎn)膜時(shí),注意膜和多孔滲水屏之間不要有氣泡